El cactus de barril
Propagación mediante el cultivo in vitro
DOI:
https://doi.org/10.29105/bys9.17-225Palabras clave:
biotecnología, cactus, especie vulnerableResumen
De las aproximadamente 1500 especies que integran la familia Cactaceae, unas 700 habitan en México. Entre ellas se encuentra Ferocactus wislizeni Britton & Rose, cuyo nombre común es biznaga de agua o cactus de barril. Esta es una de las especies de cactus consideradas como vulnerables, lo que se debe a diversos factores, entre ellos su uso ornamental y la modificación de su hábitat original por la agricultura y la ganadería. Ante las limitaciones en la reproducción sexual de esta y otras cactáceas, una alternativa promisoria es el uso de técnicas de multiplicación in vitro, que utilizan reguladores de crecimiento en medios de cultivo para estimular la propagación. En este artículo se describe la distribución de las cactáceas en América, generalidades sobre el cactus de barril, los rasgos más importantes de las técnicas de cultivo in vitro y la aplicación de esta biotecnología en especies afines.
Descargas
Citas
Amador-Alférez KA, Díaz-González J, Loza-Cornejo S, Bivián-Castro EY. 2013. Efecto de diferentes reguladores de crecimiento vegetal sobre la germinación de semillas y desarrollo de plántulas de dos especies de Ferocactus (Cactaceae). Polibotánica, 35: 109-131. https://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1405-27682013000100007
Anderson, E.F. 2001. The cactus family. Timber Press Inc. Portland, Oregon, United States of America, 776 pp.
Arellano, A., G. López, F. Chablé, A. Estrada. 2013. Effect of growth regulators on the organogenesis and multiplication of Ortegocactus macdougallii Alexander. Propagation of Ornamental Plants, 13(23): 160-167. file:///C:/Users/Sandra%20Perez/Downloads/Arellano-Perusquiaetal2013.pdf
Arias S., S. Gama-López, L. U. Guzmán-Cruz y B. Vázquez-Benítez. 2012. Flora del Valle de Tehuacán-Cuicatlán. Fascículo 95. Cactaceae. Instituto de Biología, UNAM. México, D. F., México. 240 pp.
Axelrod, D. 1979. Age and origin of Sonoran Desert Vegetation. California Academy of Sciences, 132: l-74.
Bauk, K., J. Flores, C. Ferrero, R. Pérez-Sánchez, L. Las Peñas, y D. Gurvich. 2016. Germination characteristics of Gymnocalycium monvillei (Cactaceae) along its entire altitudinal range. Botany, 95: 419–428. https://doi.org/10.1139/cjb-2016-0154
Berggren, W. A. y D. R. Prothero. 1992. In Eocene-Oligocene Climatic and Biotic Evolution, Eds Prothero D. R., Berggren W. A. Princeton Univ. Press, Princeton. pp:1–28.
Bihari, Ch., A. Kumar, S. Ahamad, M. Kumar, A. M. Rahman, K. Alam, Sh. Singh, P. Gautam, S. Singh, V. Pandey. 2022. In vitro culture methods and molecular approaches for crop improvement in solanaceous and cucurbitaceous vegetables. The Pharma Innovation Journal, 11 (12): 287-293. file:///C:/Users/Sandra%20Perez/Downloads/11-12-32-219.pdf
Choreño-Tapia, J.M., H. González-Rosas, T. Terrazas-Salgado, A. Hernández-Livera, 2002. Propagación in vitro de Cephalocereus senilis Haworth Pfeiffer a partir de aréolas. Revista Chapingo Serie Horticultura, 8(2): 183-196. http://dx.doi.org/10.5154/r.rchsh.2001.01.008
Contreras-Quiroz, M. Del R., M. M. Pando, J. Flores, E. Jurado. 2016. Effects of wetting and drying cycles on the germination of nine species of the Chihuahuan Desert. Botanical Sciences, 94(2):221-228. https://doi.org/10.17129/botsci.457
Cortés, L., I. Domínguez, T. Lebgue, O. Viramontes, A. Melgoza, C. Pinedo y J. Camarillo. 2014. Variation in the distribution of four cacti species due to climate change in Chihuahua, Mexico. International Journal of Environmental Research and Public Health, 11(1):390-402. https://doi.org/10.3390/ijerph110100390
Cota-Sánchez, J. H. 2008. Evolución de cactáceas en la región del Golfo de California. En: Estudios de las Islas del Golfo de California. L. M. Flores-Campaña (ed.). Universidad Autónoma de Sinaloa, Gobierno del Estado de Sinaloa-Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología, México. pp:67-79.
Faucon, M.P., D. Houben y H. Lambers. 2017. Plant functional traits: Soil and ecosystem services. Trends in Plant Science, 22(5):385-394. https://doi.org/10.1016/j.tplants.2017.01.005
Ferl, R. y A. L. Paul. 2000. Genome Organization and Expression. Pp. 312-357. En: Buchanan, B., W. Gruissem & R. Jones (Eds.). Biochemistry and Molecular Biology of Plants. American Society of Plant Physiologists, USA, 1280 pp.
García-González, D.A., P. Osuna-Ávila, M.S. Santos-Díaz, y J.P. Flores-Margez. 2022. Initial seed weight and scarification affect in vitro germination of Echinocactus parryi (Engelm.). Agrociencia, 2022:1-9. https://doi.org/10.47163/agrociencia.v56i5.2484
Guzmán, U., S. Arias y P. Dávila. 2007. Catálogo de Cactáceas Mexicanas. Universidad Nacional Autónoma de México y Comisión Nacional para el Conocimiento y Uso de la Biodiversidad. México, D.F, 315 pp.
Guzmán, U., S. Arias, P. Dávila. 2003. Catálogo de cactáceas mexicanas. UNAM, CONABIO, México DF, 315 pp.
Hunt, D.R., N.P. Taylor y G. Charles. 2006. New cactus lexicon. International Cactaceae Systematics Group dh books. Suiza. Volumes I.
Jiménez-Sierra, C. L. 2011. Las cactáceas mexicanas y los riesgos que enfrentan. Revista Digital Universitaria, 12:3-22.
Koi, W.S.W., J. Sundarasekar, K. Sathasivam, y S. Subramaniam. 2016. Effects of plant growth regulators on seed germination and callus induction of Hylocereus costaricensis. Pakistan Journal of Botany, 48: 977-982. https://www.pakbs.org/pjbot/PDFs/48(3)/16.pdf
Lackie, J. M. y J.A.T. Dow. 1989. The dictionary of cell biology. Ed. Academic Press, USA, 388 pp.
Loustalot, L. E., B. G. X. Malda, A. H. Suzán, S. L.G. Hernández, E. A. Guevara. 2014. Estudio de germinación y crecimiento en semillas de Ferocactus histrix (De Candolle). Revista Cactáceas y Suculentas Mexicanas, 59(3):79-95. https://biblat.unam.mx/hevila/Cactaceasysuculentasmexicanas/2014/vol59/no3/2.pdf
McIntosh, M.E. 2002. Plant size, breeding system, and limits to reproductive success in two sister species of Ferocactus (Cactaceae). Plant Ecology, 162, 273-288. https://doi.org/10.1023/A:1020329718917
Murashige, T. 1974. Plant propagation through tissue cultures. Annual Review of Plant Physiology, 25: 135-166. http://dx.doi.org/10.1146/annurev.pp.25.060174.001031
Murashige, T. y F. Skoog. 1962. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Plant Physiology, 15:473-497. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
Nobel, S. P. 1998. Los incomparables Agaves y Cactos. Ed. Trillas, México D. F. 211 pp.
Rodríguez, G.H.A., T.J.F. García, C.R. Guzmán, y P.A.A. Feregrino. 2019. Efecto del método de escarificación sobre el porcentaje de germinación en semillas (Erythrina americana Miller). Revista Perspectivas de la Ciencia y la Ingeniería, 2: 12–21. https://revistas.uaq.mx/index.php/perspectivas/article/view/188/192
Rodríguez, L., M. Daquinta, E. Hernández, R. Ardeból, J. Vásquez. 2013. Propagación in vitro de Escobaria cubensis (britton & rose) Hunts. Ciencia y sociedad, 38(2): 345-375.
Rodríguez-Ruíz, E. R., W.A. Poot-Poot, J.A. Rangel-Lucio, H. Vaquera-Huerta, O.J. González-Gaona, J. Treviño-Carreón. 2018. Germinación in vitro de biznaga cabuchera. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 9(3): 691-699.
Sánchez-Villegas, A., C. A. Rascón. 2017. Efecto de la escarificación química y del ácido giberélico en la germinación de Mammillaria mainiae. Revista Cactáceas y Suculentas Mexicanas, 62(1):4-12.
Scheinvar, E., L. Eguiarte, C. Jiménez, M. Matias, M. Rocha, K. Arzate, R. Salazar, J. Pineda, M. Olson, N. Abreu, L. Trejo, A. González, N. Tamariz y R. Chauvet. 2008. Agaves y cactáceas de Metztitlán: Ecología, evolución y conservación. Instituto Nacional de Ecología, México, 78 pp. file:///C:/Users/Sandra%20Perez/Downloads/ScheinvarEguiarte_AgavesYcactaceasDeMetztitlan.pdf
Villavicencio-Gutiérrez, E.E., G. Arellano-Ostoa, A. Cano-Pineda, J. C. Ríos-Saucedo. 2023. Multiplicación in vitro del barril de oro (Echinocactus grusonii Hildm.) (FAM.: CACTACEAE). Journal of Environmental and Agroecological Sciences, 5: 38-42.
Descargas
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Categorías
Licencia
Derechos de autor 2026 Sandra Pérez-Álvarez, Eduardo Fidel Héctor Ardisana, Rodolfo Contreras Martinez

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.
